El dominio del polo animal del erizo de mar es un centro neurogénico dependiente de Six3 | Desarrollo

RESULTADOS

Identificación de genes reguladores candidatos del dominio del polo animal (APD)

Para definir el estado regulador temprano del APD en el embrión del erizo de mar, utilizamos simultáneamente enfoques bioinformáticos y experimentales para identificar los genes que codifican proteínas reguladoras que se expresan en este territorio antes de la gastrulación. El enfoque bioinformático explotó los esfuerzos de anotación de la secuencia del genoma de nuestro laboratorio (Burke et al., 2006) y de otros (Howard-Ashby et al., 2006a; Howard-Ashby et al., 2006b; Materna et al., 2006; Tu et al., 2006), que documentaron los patrones de expresión de APD de muchos genes que codifican factores de transcripción y/o que eran ortólogos de factores que se sabe que funcionan en el tejido neural en embriones de otras especies. El enfoque experimental comparó la representación de los ARN en embriones inyectados con ARNm de cadherina y en embriones normales en la fase de eclosión de la blástula. Los embriones que carecen de beta-catenina nuclear están formados casi exclusivamente por el ectodermo del polo animal, como muestran los patrones de expresión de foxq2 y hbn. En embriones normales, estos ARNm están restringidos al polo animal a partir de la fase de blástula (Burke et al., 2006; Tu et al., 2006; Yaguchi et al., 2008) y los dominios de su expresión en la fase de blástula del mesénquima se solapan en el polo animal (Fig. 1B-D). A medida que el desarrollo avanza a través de la gastrulación, el dominio de las células que expresan hbn forma un anillo que rodea a las células que expresanfoxq2 (Fig. 1F). Cuando la señalización canónica de Wnt, Nodal y BMP se elimina mediante la inyección de ARNm de cadherina, la mitad animal del embrión expresa foxq2 mientras que la mayor parte del resto del embrión expresa hbn (Fig. 1H). Estos patrones indican que los embriones que carecen de la señalización canónica de Wnt y Nodal-BMP2/4 consisten casi por completo en un APD dramáticamente expandido, cuyos bordes exteriores están definidos por la expresión de hbn. Los transcritos Foxq2 y hbn aparecen en el APD durante las etapas de clivaje tardío y blástula temprana, lo que indica que la especificación del APD se produce al menos en este momento.

Fig. 1.

Δembriones que expresan mal la cadherina consisten en tejidos del dominio del polo animal (APD) definidos por la expresión de foxq2 y hbn.Hibridaciones in situ de montaje completo en embriones en las etapas de blástula de mesénquima(A-D) y gástrula (E-H). (E,F) Control inyectado con glicerol. (G,H) ARNm de cadherina inyectado. (A,E,G) DIC; (B-D,F,H) Fluorescencia de dos colores, ARN hbn (verde) y foxq2 (magenta). Barra de escala: 20 μm.

Para identificar los genes reguladores tempranos de la APD, comparamos las concentraciones relativas de los ARNm individuales en los embriones inyectados con ARNm de la cadherina Δ frente a los inyectados con glicerol en la fase de eclosión de la blástula utilizando un microarray que representa todas las predicciones genéticas encontradas en la secuencia del genoma del erizo de mar (Wei et al., 2006). Esta etapa marca la transición entre la escisión y el inicio de la morfogénesis y es poco después del momento en que se han detectado los primeros marcadores de la DPA (Burke et al., 2006; Howard-Ashby et al., 2006a; Howard-Ashby et al., 2006b; Tu et al., 2006; Yaguchi et al., 2008). Se identificó un conjunto de genes que codifican factores de transcripción y componentes de vías de señalización con una expresión media de al menos 3 veces mayor en dos lotes de embriones inyectados con ARNm de cadherina. Estos genes coinciden parcialmente con el conjunto de genes candidatos identificados por el método bioinformático. Los conjuntos combinados contienen 27 genes y constituyen un conjunto provisional de genes reguladores de APD (E-APD)(Tabla 1).

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Tabla 1.

Sensibilidad de los genes en el conjunto E-APD a la pérdida de beta-catenina nuclear

Con el fin de identificar los genes expresados más tempranamente dentro del conjunto E-APD, examinamos los perfiles de expresión temporal generados por microarrays como se ha descrito anteriormente (Wei et al., Los patrones se verificaron mediante la comparación con los datos publicados (Burke et al., 2006; Croce et al., 2006; Howard-Ashby et al., 2006a; Howard-Ashby et al., 2006b; Materna et al., 2006; Sweet et al., 2002; Takacs et al., 2004; Tu et al., 2006; Yaguchi et al., 2008) y mediante nuestras hibridaciones in situ de montaje completo (nuestras observaciones no publicadas). Los genes se clasificaron en tres grupos: los representados al máximo en la población de ARN materno (Fig. 2A), los fuertemente regulados durante las etapas de clivaje (Fig. 2B, C) y los regulados entre las etapas de clivaje tardío y gástrula temprana (Fig. 2D). En primer lugar, nos centramos en los miembros del grupo de expresión embrionaria temprana. Como se muestra a continuación, utilizando ensayos de pérdida y ganancia de función, identificamos uno, Sp-Six3 (en adelante Six3), que opera en o cerca de la parte superior de la jerarquía de regulación de APD.

Six3 se expresa tempranamente en el APD

La identificación de six3 del erizo de mar es inequívoca porque su secuencia está muy conservada en el homeodominio (98% idéntico aHsSix3), el dominio six (91%) y el dominio de interacción groucho (71%) (verFig. S1 en el material suplementario). Confirmamos estudios anteriores que mostraban que Six3 se expresa en un patrón dinámico durante el desarrollo de Paracentrotus lividus (Poustka etal., 2007), una especie estrechamente relacionada con Strongylocentrotuspurpuratus utilizada en este estudio. Los rasgos más importantes son que los transcritos de Six3 se expresan en el hemisferio animal durante el levante tardío (Fig. 3A), en el APD en la etapa de blástula eclosionada (Fig.3B) y luego en dos anillos (Fig.3G,H), uno cerca de la periferia del APD (Fig. 3C-F,H) y el otro en el endomesodermo (Fig. 3C-G), durante las etapas de blástula del mesénquima. Durante la gastrulación, Six3 se expresa en algunas células del mesénquima secundario dispersas por elblastocoel y en la punta del arquenteron(Fig. 3I, flecha), como informaron Howard-Ashby et al. (Howard-Ashby etal., 2006b), en células del polo animal(Fig. 3I,J) y en el ectodermo oral(Fig. 3J,K). En el estadio de plúteo, el ARN de Six3 se detecta en dos grupos de células que flanquean la boca (Fig. 3K, flechas) y en la banda ciliada (Fig. 3K).

Los niveles globales de ARNm de Six en el estadio de blástula del mesénquima temprano no cambian significativamente al inyectar ARNm de cadherina (Tabla 1). Las hibridaciones in situ son consistentes con este resultado y muestran que la distribucióndifiere en los embriones inyectados con ARNm de Δcadherina, estando ausente de las células vegetales y conservando la amplia expresión del hemisferio animal que se establece antes de la restricción por procesos dependientes de Wnt canónico (ver Fig. S2 en el material suplementario).

La función de Six3 es necesaria para la formación de APD y la diferenciación de las neuronas

Para comprobar la función de Six3, inyectamos en óvulos fecundados dos morfolinos diferentes que bloqueaban la traducción de Six3, cada uno de los cuales provocaba los mismos defectos de desarrollo. Los embriones a los 3 días adoptaron una morfología redondeada (Fig. 4A,B) y las espículas estaban reducidas o ausentes. El ectodermo del polo animal carecía de la morfología epitelial engrosada característica de la placa animal (Fig. 4, comparar A,B con C,paréntesis). En algunos lotes de embriones, la gastrulación se produjo con normalidad, aunque se retrasó, y la posición del arquenteron mostró que se estableció la polaridad oral/aboral (Fig.4A). En otros lotes, la mayoría de los embriones exogastraron. En los embriones que carecían de Six3, la diferenciación neural estaba fuertemente inhibida, como se comprobó mediante la inmunotinción de los marcadores neurales que se expresan normalmente durante los estadios de lategástrula y plúteo (Fig.4, comparar A,B con C). La mayoría (2/3) de los embriones contenían neuronas noserotonérgicas y el resto tenía un número reducido (Fig. 4D) en comparación con el número normal en esta etapa (3-5). Lo mismo ocurrió con todas las demás neuronas, analizadas por el marcador pan-neural sinaptotagmina (1e11) (Fig. 4A,B), que se encuentran en la banda APD y ciliada de los embriones normales de 3 días (Fig. 4C). Significativamente, la expresión de hbn se redujo a un nivel indetectable por hibridación in situ (Fig. 4F frente a Fig. 4E). Las mediciones de QPCR confirmaron esta observación y mostraron que los niveles de ARNm de hbn yfoxq2, que marcan los límites exteriores y las porciones interiores de la APD, respectivamente, se redujeron entre 8 y 10 veces en los morfantes Six3 en la fase de blástula temática (Fig.5).

Fig. 2.

Perfiles de expresión temporal de los genes en el conjunto provisional de APD temprano. Los métodos de perfilado fueron los descritos por Wei et al.(Wei et al., 2006). Se muestran los valores a diferentes horas después de la fecundación, de 2 a 72, como porcentaje de la intensidad máxima de la señal, para cada gen a las 2 células (ARN materno), a las 15 horas de la blástula temprana (EB), a las 30 horas de la blástula del mesénquima tardío (LMB), a las 48 horas de la lategástrula (LG) y a las 72 horas de la larva plútea (PL). Los perfiles están agrupados según el momento de la primera expresión detectable: (A) materna; (B,C) blástula temprana; (D) blástula temprana a mesenquimblástula. La posición de la línea discontinua representa el momento del ensayo en los morfólogos Six3. Los datos del gen Six3 están resaltados con una flecha roja.

Six3 es necesario para la expresión de la mayoría de los genes en el conjunto de EAPD

El llamativo fenotipo producido por la pérdida de Six3, así como su temprana expresión en el embrión, sugirió que podría funcionar cerca de la parte superior de la red reguladora de genes de APD. Para examinar esta posibilidad más a fondo, utilizamos el análisis de microarrays para buscar genes dependientes de Six3 a las 27 horas, el momento en que los genes del conjunto E-APD se acercan a los niveles máximos de expresión. Para eliminar las funciones endomesodérmicas de Six3, realizamos esta búsqueda en embriones inyectados con cadherina. Como se muestra en la Fig. 5A, la pérdida de Six3 en estos embriones eliminó por completo el desarrollo de todo el exceso de neuronas encontrado en los embriones inyectados con Δcadherina y no se formó ningún epitelio engrosado, demostrando de nuevo un papel importante para Six3 en el desarrollo de la APD. Los datos del microarray identificaron un número sorprendentemente grande de predicciones de genes (682) que estaban fuertemente regulados a la baja (al menos 4 veces) en embriones doblemente inyectados con ARNm de cadherina y Six3-MO, en comparación con embriones inyectados sólo con ARNm de cadherina. Además, más del 60% de todos los genes en la pantalla de microarrays anterior que fueron regulados al menos 3 veces en embriones inyectados con ARNm de cadherina, y por lo tanto es probable que se expresen en el APD, fueron significativamente regulados por la pérdida de Six3. Es importante destacar que los datos del microarray indicaron que la mayoría de los genes de la EAPD eran sensibles a Six3 (Fig. 5B, amarillo). De acuerdo con esto, las mediciones de QPCR en otros dos lotes de embriones mostraron que sólo 5 genes E-APD no dependían significativamente de Six3 (Fig. 5B, rojo, azul).

La sobreexpresión de Six3 es suficiente para expandir la APD

Estos resultados apoyan fuertemente la idea de que Six3 funciona temprano en las redes de regulación de los genes de la APD, y plantean la posibilidad de que pueda ser suficiente para inducir a otras células en el embrión a adoptar destinos de APD.La misexpresión de Six3 dio lugar a embriones que muestran un cambio extraordinario en la morfología. Una banda en forma de herradura de células densamente empaquetadas se extendía en dirección vegetal desde el polo animal (Fig. 6, comparar B,C con A). Las neuronas serotoninérgicas, normalmente restringidas a la placa animal (Fig. 6D), se multiplicaron por 4 y se distribuyeron a lo largo de la banda densa (Fig. 6G). Además, las formas columnares y la disposición de las proyecciones neuronales en las células que contienen sinaptogmina (1e11) son similares a las de la placa animal de los embriones de control (Fig. 6E, cuadro blanco discontinuo frente a la Fig.6H). Todas estas células contienen en sus núcleos NK2.1 (Fig. 6J-M, verde), un factor de transcripción que se expresa normalmente en la placa animal y en el ectodermo supraoral adyacente (Fig. 6I, I′; círculos verdes en la Fig. 6U), así como en algunas células del intestino anterior (Takacs et al., 2004). Una cadena de células neuronales 1e11-positivas divide la banda (Fig. 6K, rojo) y las células del lado interior de la banda NK2.1-positiva también expresan Gsc (Fig. 6L,N, rojo). La combinación de NK2.1 y Gsc marca de forma exclusiva el epitelio facial supraoral en el borde oral de la placa animal (Fig.6I,I′, células amarillas yFig. 6U, círculos amarillos). Las células columnares densamente empaquetadas de la banda expandida rodean células epiteliales más aplanadas que expresan NK2.1, pero no Gsc(Fig. 6M,N), al igual que las células de las regiones superiores de la boca de los embriones normales(Fig. 6I, boca, m). Otra prueba de que estas células son similares a las que se encuentran cerca de la boca de los embriones normales es que expresan ARNm de hbn, que, en los embriones normales de 3 días, se acumula alrededor del margen de la placa animal y se extiende hacia el ectodermo supraoral (Fig. 1, Fig. 6O). En los embriones que expresan Six3, las células positivas para hbn se concentran en el epitelio delgado del polo vegetal y, por lo tanto, se sitúan en la misma posición con respecto a la placa animal expandida y a las células positivas para Nk2.1 en el intestino anterior superior que en los embriones normales (Fig. 6P, Q). El lado opuesto a la región oral se diferencia como un epitelio escamoso fino, expresa el marcador de ectodermo aboral, Spec1 (Fig. 6R-T) y puede corresponder a la franja de ectodermo aboral positiva para hbn adyacente a la placa animal. En conjunto, estos patrones de expresión génica llevan a la notable conclusión de que Six3 es suficiente para reespecificar los destinos de las células en la mayor parte del resto del embrión, generando un embrión de 3 días que consiste en un dominio del polo animal muy expandido, pero correctamente modelado, con polaridad oral/aboral. El APD en los embriones normales y en los que expresan Six3 está marcado por los círculos azules en la Fig. 6U.

Fig. 3.

Hibridación in situ de montaje completo para six3 mRNA durante el desarrollo. Los tiempos como horas post-fertilización se muestran en la esquina superior derecha de cada imagen. (A) Blástula muy temprana. (B) Blástula en eclosión. (C-H) Blástula de mesénquima. (I,J) Lategástrula. (K) Plúteo. Todos los embriones se muestran en vista lateral, excepto en G y H, que ilustran el polo vegetal (vv) y el polo animal (apv), respectivamente. Las flechas en I y K marcan las posiciones de las células del mesénquima secundario y de las células que flanquean la boca, respectivamente. Barra de escala: 20 μm.

Fig. 4.

La pérdida de Six3 da lugar a la pérdida de neuronas y al epitelio engrosado característico de la APD. (A,B) Embriones de tres días inyectados con Six3-MO2 en la etapa de una célula, que son típicos de los fenotipos más fuertes y más débiles, respectivamente. (C) Embrión normal de 3 días. APD en A-C indicada por paréntesis; 1e11 (pan-neural, magenta), serotonina (verde), DAPI (núcleos, azul). (D) Número de embriones que contienen 0, 1, 2 o 3 neuronas serotoninérgicas por embrión en los morfantes Six3. En esta fase, los embriones normales tienen de 3 a 5 neuronas serotoninérgicas. (E,F)ARNm de hbn en blástulas de mesénquima normales (E) o en morfantes Six3 (F).Barra de escala: 20 μm.

Debido a que Six3 mal expresado puede expandir todo el APD y promover el desarrollo de neuronas ectópicas, nos preguntamos qué genes del conjunto de genes E-APD estaban regulados, utilizando mediciones de microarray y QPCR.La tabla 2 enumera 10 de estos genes cuyos niveles de ARNm son elevados al menos 3 veces en embriones inyectados con ARNm de Six3.

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Tabla 2.

Genes regulados al alza en embriones que expresan Six3

Six3 puede suprimir la señalización de TGF-β pero no elimina la polaridad oral/aboral

La misexpresión de Six3 no elimina la polaridad oral/aboral porque los marcadores de ectodermo oral yaboral se expresan en lados opuestos del embrión y las neuronas que normalmente se encuentran en el APD están confinadas a una banda intermedia.Sin embargo, Six3 mal expresado reduce la expresión de nodal, así como la de lefty y chordin, en las blástulas del mesénquima (Tabla 3, izquierda), quizás porque Six3 proporciona una entrada positiva en la expresión de FoxQ2, que se ha demostrado que reprime la expresión de nodal (Yaguchi et al., Sorprendentemente, Six3 no suprime la acumulación de ARNm de bmp2/4 tanto como reduce la expresión nodal, aunque la expresión de bmp2/4 requiere la función nodal en embriones normales (Duboc et al., 2004). Esta aparente paradoja puede ser el resultado de una combinación de la reducción de la inhibición de la señalización de BMP2/4 mediada por Chordin, junto con la difusión de BMP2/4 y la posterior autoactivación, como se ha demostrado en otros sistemas (Biehs et al., 1996;Jones et al., 1992).

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Tabla 3.

Regulación de seis3 componentes de la vía de señalización

Fig. 5.

La sensibilidad de los genes reguladores de la APD temprana a la pérdida de Six3.(A) Embriones de tres días inyectados con ARNm de Δcadherina (arriba) o con ARNm deΔcadherina y Six3-MO (abajo). La flecha indica la orientación del eje animal-vegetal. Los embriones están inmunotinados con anti-serotonina y1e11, un marcador pan-neural. (B) Cambios de ciclo de QPCR (barras azules y rojas) o diferencias de intensidad de señal log2 (barras amarillas) (eje y, izquierda) o cambios de pliegues (eje y, derecha) en los niveles de ARNm individuales en dos lotes (barras rojas y azules) de embriones morfantes Six3 y embriones de control de 27 horas, ambos con cadherina Δ. Los genes cuya expresión ha cambiado al menos 3 veces están a la izquierda de la línea verde.

Las señales canónicas de Wnt, y no de TGF-β, impiden la expansión del APD en el ectodermo lateral

Las señales que delimitan el APD dependen de la señalización canónica de Wnt, ya que su eliminación permite que el APD abarque casi todo el embrión(Yaguchi et al., 2006)(Fig. 1). Dado que Nodal y BMP dependen de las señales Wnt canónicas, eliminamos ambos ligandos del TGF-β con un Nodal-MO (Yaguchi et al.,2008) para comprobar si eran responsables de la restricción de la APD dependiente de Wnt. La Fig.7B,F muestra que este no es el caso porque las neuronas serotoninérgicas permanecen restringidas a la APD en estos embriones. Sin embargo, cuando a los morfantes Nodal se les proporciona Six3 exógeno, las neuronas serotoninérgicas aumentan en gran medida en número y aparecen en toda la mitad animal del embrión (Fig. 7D), como se observa en los embriones que expresan la cadherina (Yaguchi et al., 2006), que carecen de la señalización Wnt canónica. Por lo tanto, la expresión ectópica de Six3 puede anular las otras señales, presumiblemente Wnt, que restringen estas neuronas a laAPD de los embriones normales.

Aunque las neuronas serotonérgicas no se forman en el ectodermo lateral en los Nodalmorfantes, algunas neuronas no serotonérgicas sí lo hacen(Fig. 7B). Esto resulta principalmente, si no exclusivamente, de la pérdida de la señalización de BMP2/4, ya que el mismo resultado se obtiene en embriones inyectados con BMP2/4-MO (S.Y., J.Y., L.M.A., R.C.Ay R. D. Burke, sin publicar). Dado que el desarrollo de todas las neuronas depende de Six3 en el embrión normal, nos preguntamos si las neuronas ectópicas en los Nodalmorfos también dependen de Six3 mediante la co-inyección de Nodal-MO y Six3-MO. Como se esperaba, las neuronas serotoninérgicas presentes en el polo animal en los Nodalmorfantes se perdieron en los morfantes dobles (Fig. 7G,H). Estos embriones no contienen neuronas diferenciadas no serotoninérgicas con procesos axonales, aunque se observaron algunos puntos inmunorreactivos de 1e11. Estos podrían indicar la presencia de neuronas incompletamente diferenciadas o reflejar un sesgo neural inicial de las células del ectodermo que normalmente es anulado por la señalización del TGF-β.

Six3 puede antagonizar la señalización Wnt

El hecho de que la APD no se expanda en los morfantes de Nodal pero sí en los embriones inyectados con cadherina y que Six3 pueda superar los efectos dependientes de Wnt canónico en el ectodermo lateral plantean la posibilidad de que Six3 reprima la señalización Wnt. En apoyo de esta hipótesis, encontramos que la expresión de Six3 regula a la baja la mayoría de los genes que codifican ligandos Wnt que se expresan durante el desarrollo temprano (Tabla 3, izquierda) (Fig. 8). En conjunto, estos resultados sugieren que los límites de la APD están determinados por el antagonismo Six3/Wnt.

Six3 no es suficiente para reprimir la expresión de wnt y nodal en la APD

La capacidad de Six3 para regular fuertemente hacia abajo (directa o indirectamente) los genes que codifican los ligandos Wnt, así como nodal, izquierdo y chordin, plantea la posibilidad de que normalmente impide la expresión de estos genes en la APD. Para evaluar esto, primero examinamos los efectos de Six3 en la expresión de genes en embriones inyectados con Δcadherina para eliminar los posibles efectos de la función de Six3 en el endomesodermo. Tanto los datos de microarray como los de QPCR muestran que, en embriones formados mayoritariamente por el APD, Six3 suprime la expresión de los genes Wnt, y nodal, lefty ychordin (Tabla 3;Fig. 8). Sin embargo, en embriones normales (inyectados con glicerol), no se detecta la represión de estos genes por parte de Six3(Tabla 3;Fig. 8), lo que indica que hay mecanismos adicionales que protegen al APD de la expresión de Wnt y TGF-β en el embrión normal.

Regulación por Six3 de otras vías de señalización

Six3 también regula positivamente (directa o indirectamente) genes que codifican proteínas que funcionan en otras vías de señalización(Tabla 3). Entre ellos se encuentraelta, el ligando de Notch que media en la inhibición lateral, un proceso crucial en el desarrollo neural, así como otros reguladores potenciales de laneurogénesis. Estos últimos incluyen fgf9/16/20, un receptor similar a fgfr, unido a la membrana y que carece del dominio tirosina quinasa, y frizzled5/8, un receptor Wnt que puede transducir señales no canónicas, pero cuya función en la APD es desconocida (Croce etal., 2006). En futuros estudios se examinará cómo las actividades de estas vías de señalización y los factores de transcripción dependientes de Six3 temprano interactúan en la red de regulación genética de la APD.

Fig. 6.

La mixtificación de Six3 convierte al embrión en un APD expandido. Los alambres tienen 3 días de edad. (A) Embrión normal, DIC; vista del blastoporo, oralup. (B,C) Embriones con ARNm six3, DIC; (B)vista oral, (C) vista lateral; las flechas en B indican la frontera entre la placa animal expandida y el epitelio fino más vegetal.(D,E) Neuronas serotoninérgicas (sero, verde) y todas (1e11, magenta) en embriones normales. (F-H) CID e inmunotinciones, como en D y E, de embriones que expresan mal el ARNm3; vista oral, poste del animal hacia arriba.(I,I′) Inmunotinciones de embriones normales de 3 días para NK2.1 (verde) y Gsc (magenta); (I) vista lateral; células en la APD a la derecha de la línea blanca discontinua; (I′) vista oral, las células en la APD están entre las líneas blancas discontinuas. Las células NK2.1-positivas marcadas con puntas de flecha se encuentran en lablastocélula y no forman parte de la APD; m, boca. (J-T) Embriones que expresan mal el ARN-63. (J,K) NK2.1 (verde); 1e11 (magenta).(L-N) NK2.1 (verde); Gsc (magenta). (O-Q) Imágenes DIC de hibridación in situ de hbnwhole-mount en embriones de control (O) y en embriones inyectados con six3mRNA (P,Q); poste del animal hacia arriba; el círculo blanco en O marca la boca. (R-T) Serie de focos de un embrión teñido con DAPI, y para los epítopos1e11 (verde) y Spec1 (magenta); Spec1 marca la epidermis delgada y expandida del laboratorio que se colapsa y arruga en la preparación. (U)Diagrama que ilustra la distribución de los tipos de células APD en embriones normales y en embriones que expresan mal el ARN-Six3. Los puntos de color muestran la distribución de las células que expresan las proteínas o los ARNm indicados y los óvalos negros y morados indican las neuronas serotoninérgicas (Sn) y no serotoninérgicas (n-Sn), respectivamente.Los sombreados verdes y azules identifican el epitelio facial y la banda ciliada, respectivamente. La inyección de ARNm Six3 (flecha) da lugar a un embrión esférico de 3 días (derecha; véanse también B,C) que consiste en gran medida en la región delineada en azul en el embrión normal (izquierda). En el embrión que expresa Six3-mis, el número de neuronas y células NK2.1/gsc-positivas (amarillo; supraoral) se expande enormemente y las células hbn-positivas (azul), que normalmente flanquean la placa animal en el lado oral en esta etapa, se encuentran en el polo vegetal. Las flechas indican las posiciones de los ejes oral-aboral y animal-vegetal tanto en los embriones normales como en los que expresan Seis3. Barras de escala: 20 μm.

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