CD11c+ monocyte/macrophages promote chronic Helicobacter hepaticus-induced intestinal inflammation through the production of IL-23

H. hepaticus-driven inflammation alters the intestinal mononuclear phagocyte compartment

Bakteria Gram-ujemna Helicobacter hepaticus (Hh) jest nieinwazyjnym organizmem powszechnie występującym w warstwie śluzowej dolnego odcinka jelita u myszy. U zwierząt typu dzikiego zakażonych tą bakterią nie dochodzi do rozwoju immunopatologii jelitowej i służą one jako nosiciele zakażenia.21 Jednak myszy z genetycznymi niedoborami w szlaku IL-10/IL-10R są podatne na eksperymentalne zakażenie Hh i rozwijają ciężkie zapalenie okrężnicy i kątnicy (typhlocolitis) związane z hiperplazją nabłonka.22, 23 Podobnie, zakażenie Hh myszy typu dzikiego z jednoczesnym podawaniem przeciwciał monoklonalnych anty-IL-10R (mAbs) wyzwala zależne od IL-23 zapalenie jelit wraz z silną odpowiedzią spolaryzowanych efektorowych komórek T helpera typu 1/typu 17 (Th1/Th17)23. Myszy zakażone Hh i leczone przeciwciałami anty-IL-10R, ale nie niezakażone lub kontrolne leczone pojedynczo, rozwijają histologiczne cechy zapalenia jelita grubego w ciągu 2-3 tygodni po zakażeniu (Figura 1a). Myszy poddane działaniu Hh i anty-IL-10R wykazują ponadto wyraźny naciek leukocytów w obrębie blaszki właściwej (Figura 1b), w tym dominujące populacje neutrofili i monocytów MHCII+ (Figura 1c i Suplementacyjna Figura S1a online). W jelicie grubym bez zapalenia monocyty dostające się z krwi do blaszki właściwej preferencyjnie dają początek makrofagom tkankowym11 (zdefiniowanym jako CD11b+ CX3CR1hi Ly6Clo, zielony podzbiór), wyrażającym wysoki poziom CD64, MHCII, F4/80 i CD11c (Figura 1d i Dodatkowa Figura S1b). Jednakże proces ten jest dramatycznie zmieniony podczas zapalenia i zaobserwowaliśmy wyraźną akumulację monocytów MHCII+ (zdefiniowanych jako komórki CD11b+ CX3CR1int Ly6Chi, czerwony podzbiór) w obrębie propria lamina okrężnicy. Komórki te charakteryzują się ekspresją CD64 i MHCII oraz pośrednimi poziomami F4/80, CD24 i CD11c (Figura 1c-e i Dodatkowa Figura S1a). W stanie ustalonym monocyty i makrofagi MHCII+ wyrażają receptor mannozy (CD206), marker związany z przeciwzapalną funkcją makrofagów.24 Jednak ekspresja CD206 była niższa w monocytach i makrofagach MHCII+ podczas zapalenia jelita grubego (Figura 1f), co sugeruje, że nie tylko funkcje monocytów, ale także makrofagów zostały zmodyfikowane podczas zapalenia. Rzeczywiście, stwierdziliśmy, że podczas zapalenia monocyty MHCII+ wyrażały większe ilości białka czynnika martwicy nowotworów-α i IL-6 oraz mRNA Nos2 (indukowalna syntaza tlenku azotu), a IL-6 była również zwiększona w makrofagach (Dodatkowa Figura S1c). Produkcja IL-10 zarówno przez monocyty MHCII+, jak i makrofagi była również zwiększona podczas zapalenia (Supplementary Figure S1c), najprawdopodobniej odzwierciedlając napędzaną zapaleniem ścieżkę ujemnego sprzężenia zwrotnego.

Rysunek 1
figure1

Helicobacter hepaticus (Hh)-driven inflammation alters the intestinal mononuclear phagocyte compartment. Myszy CX3CR1GFP/+ zakażono Hh i leczono przeciwciałem monoklonalnym anty-IL-10R (mAb) lub odpowiednimi pojedynczymi kontrolami, jak wskazano, i porównano z niezakażonymi kontrolami (Ctrl). Myszy poddano analizie po 2-3 tygodniach. (a) Wyniki histopatologii okrężnicy. (b) Całkowita liczba komórek błony śluzowej okrężnicy na mysz. (c) Częstość podzbiorów komórek mieloidalnych wśród wszystkich leukocytów CD11b+ w okrężnicy. (d) Reprezentatywne wykresy sortowania komórek aktywowane fluorescencją (FACS) i (e) histogramy wskazanych podgrup komórek mieloidalnych: MHCII+ monocyty (CD11b+ CX3CR1int Ly6Chi, czerwony podzbiór), makrofagi (CD11b+ CX3CR1hi Ly6Clo komórki, zielony podzbiór), CD11b+ DCs (CD11c+ CD103- CD11b+ CX3CR1int komórki, szary podzbiór) i CD103+ DCs (CD11c+ CD103+ CX3CR1- komórki, pomarańczowy podzbiór). Wszystkie komórki były pregowane na żywych leukocytach CD45+, z wyłączeniem neutrofili i eozynofili. Pokazano kontrole fluorescencji minus jeden (FMO) dla komórek CD11b+ MHCII+. (f) Częstość występowania komórek CD206+ wśród wskazanych podgrup określona metodą cytometrii przepływowej. Punkty danych reprezentują pojedyncze myszy, słupki wskazują medianę. Wszystkie dane są reprezentatywne dla co najmniej dwóch niezależnych eksperymentów. **P<0,01, ***P<0,001 określone na podstawie jednokierunkowej analizy wariancji (ANOVA) z post-testem Bonferroniego. DC, komórka dendrytyczna; IL-10, interleukina-10; LPL, leukocyt lamina propria.

Slajd PowerPoint

Poza różnicowaniem się w makrofagi, wykazano również, że monocyty MHCII+ różnicują się w heterogeniczny podzbiór Ly6Clo CX3CR1int związany zarówno z makrofagami, jak i klasycznymi DC.11. Wśród tego heterogennego przedziału, CD11b+ DCs (zdefiniowane jako komórki CD11c+ CD103- CD11b+ CX3CR1int, szary podzbiór) mogą być łatwo odróżnione od makrofagów w warunkach homeostatycznych. CD11b+ DCs wykazują ekspresję MHCII, CD24 i CD11c, ale nie wykazują ekspresji CD64 i F4/80, markerów powszechnie kojarzonych z makrofagami (Figura 1d i Dodatkowa Figura S1b). Jednak rozróżnienie między makrofagami a CD11b+ DCs zostało zatarte podczas zapalenia przez pojawienie się populacji wykazującej ekspresję CD64 (Figura 1d,e) i obecnie nie jest jasne, jak te komórki ontogenetycznie i funkcjonalnie odnoszą się do makrofagów w stanie stacjonarnym lub CD11b+ DCs.

Podczas zapalenia jelita grubego wyraźna akumulacja monocytów MHCII+ korelowała ze zmniejszoną częstością makrofagów, CD11b+ DCs i CD103+ DCs (zdefiniowanych jako komórki CD11c+ CD103+ CX3CR1-, pomarańczowa podgrupa) wśród komórek CD45+ lamina propria (Figura 1c,d). Jednakże liczby bezwzględne wskazywały na niewielki wzrost CD11b+ DCs i CD103+ CD11b+ DCs. W przeciwieństwie do tego, liczby makrofagów pozostały niezmienione, a CD103+ CD11b- DCs były nieznacznie zmniejszone (Supplementary Figure S1a).

W sumie, infekcja Hh w obecności blokady IL-10R wyzwala zapalenie jelit związane z dramatycznymi zmianami w przedziale mieloidalnym. Obserwowaliśmy dominującą akumulację granulocytów i monocytów MHCII+ w obrębie lamina propria okrężnicy. Ponadto monocyty MHCII+ i makrofagi uzyskały bardziej prozapalny profil.

Fagocyty jednojądroweCD11c+ napędzają zapalenie jelita grubego poprzez produkcję IL-23

Ponieważ IL-23 została zidentyfikowana jako główny czynnik napędzający zapalenie jelita grubego w tym modelu,23 zbadaliśmy następnie znaczenie funkcjonalne produkcji IL-23 przez fagocyty jednojądrowe w rozwoju zapalenia jelita grubego w modelu Hh+anti-IL-10R. Dlatego skrzyżowaliśmy myszy wyrażające białko zielonej fluorescencji (GFP) i rekombinazę Cre pod kontrolą promotora CD11c (kodowanego przez Itgax)25, 26 z myszami posiadającymi dwa miejsca loxP flankujące cztery eksony genu Il23a27 w celu wygenerowania myszy Cd11c-cre.Il23afl/fl (CD11cIL-23-).

Ponieważ myszy CD11cIL-23- wyrażają GFP pod kontrolą promotora CD11c i dlatego nie można ich skrzyżować z myszami reportera CX3CR1-GFP, oparliśmy się na alternatywnej strategii bramkowania, aby ocenić przedział mieloidalny u tych myszy (Supplementary Figure S2). W stanie ustalonym myszy CD11cIL-23- miały podobną liczbę leukocytów w jelicie grubym, jak ich odpowiedniki z niedoborem IL-23 (CD11cIL-23+) (Dodatkowa Figura S3a) i nie zaobserwowano znaczących zmian w częstości komórek mieloidalnych lub T (Dodatkowa Figura S3b). Jednakże, ponieważ IL-23 jest wymagana do utrzymania zróżnicowanych komórek Th17,28 myszy CD11cIL-23- wykazywały silnie zmniejszone poziomy IL-17+ i IL-17+ IFNγ+ CD4+ komórek T w okrężnicy (Dodatkowa Figura S3c).

Po zakażeniu Hh i leczeniu anty-IL-10R, myszy CD11cIL-23- wykazywały uderzającą redukcję zapalenia jelita grubego w porównaniu z myszami CD11cIL-23+, ze zmniejszoną hiperplazją krypt nabłonkowych i mniejszą infiltracją leukocytów w całej okrężnicy i kątnicy (Figura 2a,b). Myszy CD11cIL-23- nie wykazywały również rozwoju splenomegalii (Figura 2c), wskazując, że były one również chronione przed ogólnoustrojowymi objawami choroby. Zmniejszona patologia obserwowana u myszy CD11cIL-23- nie była konsekwencją zróżnicowanego obciążenia bakteryjnego, ponieważ poziomy kolonizacji Hh były podobne w grupach CD11cIL-23- i CD11cIL-23+ (Figura 2d). Zgodnie ze zmniejszonymi zmianami patologicznymi, zarówno wrodzone, jak i adaptacyjne cytokiny efektorowe były silnie zmniejszone w okrężnicy myszy CD11cIL-23- po blokadzie Hh i IL-10R (Figura 2e), podobnie jak ilość samej IL-23 (Figura 2f).

Rycina 2
figure2

Interleukina-23 (IL-23) z komórek CD11c+ napędza Helicobacter hepaticus (Hh)-indukowane zapalenie jelita grubego. Myszy CD11cIL-23+ i CD11cIL-23- zostały zakażone Hh w połączeniu z leczeniem przeciwciałem monoklonalnym anty-IL-10R (mAb) i poddane analizie po 3 tygodniach. Niezakażone myszy służyły jako kontrola. (a) Reprezentatywne mikrografy przekrojów barwionych hematoksyliną i eozyną (bar-200 μm) oraz wyniki histopatologiczne okrężnicy i kątnicy. (b) Całkowita liczba komórek lamina propria na mysz. (c) Masa śledziony. (d) Poziom kolonizacji Hh określony ilościowo metodą PCR (qPCR). (e,f) Ekspresja cytokin oceniana za pomocą (e) multipleksowego testu cytometrycznego przepływu lub (f) enzymatycznego testu immunosorbcyjnego (ELISA) na supernatantach niestymulowanych komórek propriozy blaszki właściwej hodowanych przez 48 h. Punkty danych reprezentują poszczególne myszy, słupki wskazują średnią. Dane są zebrane z dwóch niezależnych eksperymentów i są reprezentatywne dla czterech eksperymentów. **P<0,01, ***P<0,001 jak określono przez (a-c) jednokierunkową analizę wariancji (ANOVA) z post-testem Bonferroniego lub (d-f) test U Manna-Whitneya. IFNγ, interferon-γ; TNFα, czynnik martwicy nowotworów-α.

Slajd PowerPoint

Zgodnie z ich zmniejszoną infiltracją leukocytów, myszy CD11cIL-23- wykazywały zmniejszoną częstotliwość i liczbę zarówno monocytów MHCII- i MHCII+ (Figura 3a), jak i neutrofili (Supplementary Figure S3d) w obrębie blaszki właściwej po infekcji Hh i blokadzie IL-10R w porównaniu z podobnie leczonymi miotami CD11cIL-23+. Mniejsza infiltracja monocytów u myszy CD11cIL-23- korelowała z większą częstością makrofagów lamina propria, podczas gdy częstości CD11b + DCs i CD103 + DCs były niezmienione, a liczby bezwzględne zostały zmniejszone (Dodatkowa Figura S3d).

Rycina 3
figure3

MHCII+ monocyty i patogenne komórki T są zmniejszone u myszy zakażonych Helicobacter hepaticus (Hh) i leczonych anty-IL-10R CD11cIL-23-. Myszy CD11cIL-23+ i CD11cIL-23- zostały zakażone Hh w połączeniu z leczeniem przeciwciałem monoklonalnym anty-IL-10R (mAb) i poddane analizie po 3 tygodniach. (a) Reprezentatywne wykresy sortowania komórek aktywowanych fluorescencją (FACS), częstości wśród leukocytów CD45+ i liczby bezwzględne wskazanych podgrup mieloidów w propria okrężnicy. (b) Częstość występowania komórek T CD4+ wśród leukocytów CD45+. (c) Reprezentatywne wykresy FACS i częstości komórek IFNγ+, IFNγ+ IL-17A+, i IL-17A+ wśród komórek CD4+ T po restymulacji fosforanem 12-myristanu 13-octanu (PMA) i jonomycyną. Punkty danych reprezentują poszczególne myszy, słupki wskazują medianę. Dane są reprezentatywne dla dwóch niezależnych eksperymentów. *P<0,05, **P<0,01 jak określono testem U Manna-Whitneya. IFNγ, interferon-γ; IL, interleukina; MHCII, major histocompatibility complex class II; TCR, receptor komórek T.

Slajd PowerPoint

Ponieważ IL-23 napędza zapalenie jelit poprzez bezpośredni wpływ na komórki T, promując ich akumulację i proliferację w okrężnicy,29 zbadaliśmy przedział komórek T okrężnicy myszy CD11cIL-23- i CD11cIL-23+ podczas zapalenia okrężnicy. Myszy CD11cIL-23- wykazywały niższą częstotliwość występowania komórek T CD4+ w okrężnicy w porównaniu z ich pobratymcami bogatymi w IL-23 (Figura 3b). Podczas gdy myszy CD11cIL-23+ wytworzyły silną odpowiedź efektorową Th1/Th17 charakteryzującą się pojawieniem się jedno- i podwójnie produkujących IL-17A+/IFNγ+ komórek T, myszy CD11cIL-23- wykazywały tylko łagodną indukcję odpowiednich cytokin (Figura 3c).

Ogólnie rzecz biorąc, brak zapalenia jelita grubego u myszy CD11cIL-23- wskazuje, że produkcja IL-23 przez MNPs wykazujące ekspresję CD11c odgrywa nieredundantną rolę w odpowiedzi zapalnej jelita.

MHCII+ monocyty i makrofagi są głównym źródłem IL-23 po zakażeniu H. hepaticus

Aby lepiej zrozumieć sekwencję zdarzeń związanych z rozwojem zapalenia jelita grubego u myszy z niedoborem IL-23, najpierw monitorowaliśmy ekspresję IL-23 w leukocytach oczyszczonych z okrężnicy propria. Ekspresja mRNA Il23a była konsekwentnie wykrywalna 4-5 dni po rozpoczęciu zapalenia okrężnicy (Figura 4a), co sugeruje, że we wczesną produkcję IL-23 w okrężnicy zaangażowany jest podzbiór komórek rezydujących w tkankach i/lub szybko mobilizowanych. Dlatego wybraliśmy ten punkt czasowy do dalszych analiz. W 4 dni po zakażeniu Hh i leczeniu anty-IL-10R, myszy CD11cIL-23+ wykazywały zwiększoną infiltrację leukocytów w lamina propria w stosunku do niezakażonych myszy kontrolnych (Figura 4b). Ten napływ korelował ze zwiększoną liczbą wszystkich podzbiorów MNP w okrężnicy (Supplementary Figure S4a,b), a także zwiększoną częstotliwością monocytów MHCII- i MHCII+ (Figura 4c,d), neutrofili (Figura 4d), CD103+ CD11b- DCs i CD103+ CD11b+ DCs (Figura 4e). Jednakże częstości makrofagów i CD11b+ DCs wśród wszystkich leukocytów były niezmienione w tym punkcie czasowym (Figura 4

Rycina 4
figure4

MHCII+ monocyty i makrofagi są głównymi producentami interleukiny-23 (IL-23) podczas zapalenia jelita grubego wywołanego przez Helicobacter hepaticus (Hh). Myszy CD11cIL-23+ (Cre-GFP+) zakażono Hh w połączeniu z leczeniem przeciwciałem monoklonalnym anty-IL-10R (mAb) i poddano analizie 4 dni po zakażeniu wraz z niezakażoną grupą kontrolną (Ctrl). (a) Analiza ilościowa PCR (qPCR) ekspresji mRNA Il23a w tkance okrężnicy pobranej od pięciu osobników myszy we wskazanych punktach czasowych. (b) Całkowita liczba komórek lamina propria na mysz w 4. dniu. (c) Reprezentatywne wykresy sortowania komórek aktywowane fluorescencją (FACS) i (d,e) częstości wskazanych podgrup mieloidalnych (jak określono w Supplementary Figure S2) wśród leukocytów CD45+ w okrężnicy. (f,g) Reprezentatywne wykresy FACS ekspresji zielonego białka fluorescencyjnego (GFP) związanego z CD11c-Cre vs. (f) CD11c i (g) MHCII. (h) Analiza qPCR ekspresji Il23a mRNA przez komórki Cre-GFP+ i Cre-GFP- wysortowane FACS z leukocytów okrężnicy. (i) Częstość ekspresji GFP związanej z CD11c-Cre wśród wskazanych podzbiorów mieloidów okrężnicy. Prostokąty wskazują Cre-pozytywne podzbiory, które zostały wybrane do dalszej analizy w j. (j) Analiza qPCR ekspresji mRNA Il23a przez podzbiory mieloidalne FACS-sortowane od myszy CD11cIL-23+ i CD11cIL-23-. Pokazano statystyki porównujące komórki od myszy CD11cIL-23+ i CD11cIL-23-. (k) Analiza qPCR ekspresji mRNA Il23a przez posortowane FACS monocyty MHCII- i MHCII+. Punkty danych reprezentują poszczególne myszy, słupki wskazują medianę. Wszystkie wykresy słupkowe komórek sortowanych metodą FACS przedstawiają średnią±s.e.m. z 10-15 myszy, sortowanych w dwóch powtórzeniach biologicznych. Dane są reprezentatywne dla dwóch niezależnych eksperymentów. *P<0,05, **P<0,01, ***P<0,001, jak określono przez (a, j) jednokierunkową analizę wariancji (ANOVA) z post-testem Bonferroniego lub (b-h, k) test U Manna-Whitneya. DC, komórka dendrytyczna; MHCII, główny kompleks zgodności tkankowej klasy II.

Slajd PowerPoint

Aby dokładniej scharakteryzować podzbiory mieloidów zaangażowane w zależne od IL-23 zapalenie jelit, zbadaliśmy ekspresję GFP związaną z CD11c-Cre-associated przez komórki lamina propria od myszy CD11cIL-23+. Analiza komórek CD45+ potwierdziła, że ekspresja Cre-GFP była ograniczona do leukocytów wyrażających CD11c na ich powierzchni komórkowej (Figura 4f), ale była głównie obserwowana w komórkach CD11chi. Ponadto fluorescencja GFP związana z Cre była obserwowana tylko w komórkach MHCII+ (Figura 4g) i, co ciekawe, ekspresja mRNA Il23a była ograniczona do komórek Cre-GFP+ (Figura 4h). Większość MNP z lamina propria wykazuje wysoki poziom ekspresji CD11c (Figura 1e i Dodatkowa Figura S1b). Analiza różnych podzbiorów mieloidów u myszy CD11cIL-23+ ujawniła, że ekspresja GFP związana z CD11c-Cre została wykryta głównie wśród makrofagów, CD103+ CD11b- DCs, CD103+ CD11b+ DCs, (Figura 4i) i CD11b+ DCs (nie pokazano). Ponadto, ponad połowa monocytów MHCII+ była pozytywna dla Cre-GFP, wskazując, że wszystkie te podzbiory mogą być potencjalnym źródłem IL-23. W przeciwieństwie do tego, ekspresja Cre była nieobecna w eozynofilach, neutrofilach i monocytach MHCII- (Figura 4i).

Aby scharakteryzować, które z tych podzbiorów stanowią funkcjonalne źródło IL-23 in vivo, oceniliśmy ekspresję Il23a mRNA przez odpowiednie populacje sortowane za pomocą cytometrii przepływowej od myszy CD11cIL-23- i CD11cIL-23+ 4 dni po infekcji Hh w obecności blokady IL-10R. Co uderzające, ekspresja mRNA Il23a w komórkach CD11cIL-23+ była w większości ograniczona do monocytów i makrofagów MHCII+, z niską ekspresją wykrywalną wśród CD103+ CD11b- DCs i CD103+ CD11b+ DCs (Figura 4j). Ponadto ekspresja Il23a zarówno przez monocyty MHCII+, jak i makrofagi była znacznie zmniejszona u myszy CD11cIL-23-, wskazując, że ekspresja CD11c-Cre była aktywna w tych podzbiorach komórkowych (Figura 4j). Niska ekspresja Il23a obserwowana w monocytach MHCII- (Figura 4k) sugeruje, że indukcja IL-23 występuje w lamina propria podczas ich lokalnego dojrzewania i nabywania MHCII.

Ponieważ poziom ekspresji CX3CR1 identyfikuje dyskretne podzbiory MNP, powtórzyliśmy naszą analizę u myszy CX3CR1GFP/+. U niezakażonych myszy wykryto niskie poziomy konstytutywnego Il23a wśród monocytów MHCII+, CD103+ CD11b+ DCs, (Dodatkowa Figura S4c,d) i CD11b+ DCs (Dodatkowa Figura S4d). Jednak zwiększona ekspresja Il23a w 4 dniu po zakażeniu Hh i blokadzie IL-10R była konsekwentnie wykrywana tylko w monocytach MHCII+ (Supplementary Figure S4d) i makrofagach (nie pokazano). Podczas przebiegu zapalenia wysoka ekspresja Il23a utrzymywała się w monocytach MHCII+ i ich potomstwie rozwojowym, ale nie w CD103+ DCs (Figura 5a). Wśród podzbiorów CX3CR1int, ekspresja Il23a była dalej ograniczona do komórek CD64+ (Figura 5b).

Rysunek 5
figure5

Produkcja interleukiny-23 (IL-23) podczas zapalenia jelita grubego jest ograniczona do podzbiorów CD64+ wykazujących ekspresję CX3CR1. Myszy CX3CR1GFP/+ zostały zakażone Helicobacter hepaticus (Hh) w połączeniu z leczeniem przeciwciałem monoklonalnym anty-IL-10R (mAb) i analizowane 2 tygodnie po zakażeniu wraz z niezakażonymi kontrolami (Ctrl). Komórki okrężnicy były sortowane za pomocą cytometrii przepływowej, a ekspresja Il23a mRNA była analizowana za pomocą ilościowej PCR (qPCR). (a) Ekspresja Il23a mRNA i reprezentatywne wykresy FACS (fluorescence-activated cell sorting) następujących sortowanych populacji: (1) monocytów MHCII+ (Mono), (2) makrofagów/DCs Ly6Clo CX3CR1int, (3) makrofagów CX3CR1hi oraz (4) DCs CD103+. (b) Ekspresja mRNA Il23a i reprezentatywne wykresy FACS następujących posortowanych populacji: (1) komórek CX3CR1int MHCII+ CD64- i (2) komórek CX3CR1int MHCII+ CD64+. Wykresy słupkowe przedstawiają średnie+s.e.m. z 10-15 myszy, sortowanych w dwóch powtórzeniach biologicznych. Dane są reprezentatywne dla trzech niezależnych eksperymentów. **P<0,01, ***P<0,001, jak określono za pomocą jednokierunkowej analizy wariancji (ANOVA) z post-testem Bonferroniego. DC, komórka dendrytyczna; Macs, makrofagi; MHCII, major histocompatibility complex class II; Mono, monocyt; NS, nieistotne.

Slajd PowerPoint

Patrząc łącznie, nasze dane wskazują, że indukcja IL-23 w zapaleniu jelita grubego jest zawarta w komórkach CX3CR1-ekspresyjnych CD11c+, które również wyrażają MHCII i CD64.

Batf3-zależne CD103+ DCs są zbędne dla przewlekłego zapalenia jelita grubego

CD103+ CD11b+ DCs występują głównie w jelicie cienkim myszy i są prawie nieobecne w okrężnicy.6 Zamiast tego większość okrężnicy CD103+ DC jest CD11b- i wymaga czynnika transkrypcyjnego Batf3 do ich rozwoju.30 Myszy Batf3-/- pozbawione są zatem rezydujących w tkankach subsetów CD8α+ i CD103+ CD11b- nielimfoidalnych DC. Zgodnie z oczekiwaniami, komórki CD103+ CD11b- były silnie zredukowane w okrężnicy propria myszy Batf3-/-, podczas gdy CD103+ CD11b+ DCs były niezmienione (Figura 6a,b). Aby ocenić, czy CD103+ CD11b- DCs mogą być zaangażowane w rozwój zapalenia jelita grubego, zainfekowaliśmy myszy Batf3-/- Hh w połączeniu z leczeniem anty-IL-10R. W 2 tygodnie po rozpoczęciu zapalenia jelita grubego, liczba CD103+ CD11b- DCs była nadal znacznie zmniejszona w blaszce właściwej (Figura 6b), ale nie zaobserwowano różnic w nacieku leukocytów (Figura 6c) lub ciężkości zapalenia jelita grubego (Figura 6d) u myszy Batf3-/- w porównaniu z ich odpowiednikami typu dzikiego, co wskazuje, że zależne od Batf3 DCs są zbędne do indukcji zapalenia jelit napędzanego IL-23 w tym modelu.

Rycina 6
figure6

Komórki dendrytyczne (DCs) zależne od Batf3 są zbędne do produkcji interleukiny-23 (IL-23) w Helicobacter hepaticus (Hh)-driven colitis. Myszy typu dzikiego (WT) i Batf3-/- zostały zainfekowane Hh w połączeniu z leczeniem przeciwciałem monoklonalnym anty-IL-10R (mAb) i analizowane po 2 tygodniach wraz z niezainfekowanymi kontrolami (Ctrl). (a) Reprezentatywne wykresy sortowania komórek aktywowane fluorescencją (FACS) i (b) częstość i liczba komórek CD103+ CD11b- i CD103+ CD11b+ wśród leukocytów CD45+ okrężnicy. (c) Całkowita liczba komórek lamina propria na mysz. (d) Ocena histopatologiczna okrężnicy. Punkty danych reprezentują pojedyncze myszy, słupki wskazują medianę. *P<0,05 określone testem U Manna-Whitneya, NS, nieistotne.

Slajd PowerPoint

Dojrzałe makrofagi produkują IL-23 w odpowiedzi na stymulację H. hepaticus in vitro, ale dzielą funkcjonalną redundancję z monocytami MHCII+ in vivo

Aby rozszyfrować udział makrofagów w produkcji IL-23, wygenerowaliśmy makrofagi pochodzące ze szpiku kostnego (BMDMs) od myszy CD11cIL-23- i CD11cIL-23+. Po zróżnicowaniu z pożywką kondycjonowaną komórkami L929, około połowa BMDMs była pozytywna dla Cre-GFP i wykazywała ekspresję CD64, F4/80 i CD11c (Supplementary Figure S5a). BMDMs były stymulowane in vitro żywymi bakteriami Hh w obecności przeciwciała anty-IL-10R, a ich odpowiedź porównano z odpowiednimi kontrolami. Co uderzające, stymulacja CD11cIL-23+ BMDMs z Hh spowodowała ekspresję mRNA Il23a, a ta odpowiedź była wzmocniona w obecności blokady sygnalizacji IL-10R, podczas gdy Il23a nie była wyrażana przez niestymulowane BMDMs lub te traktowane samym przeciwciałem anty-IL-10R (Supplementary Figure S5b). Podobnie, zakażenie myszy tylko Hh indukowało niski wybuch IL-23 w monocytach i makrofagach in vivo, a ta odpowiedź była silnie zwiększona w przypadku braku sygnalizacji IL-10R (Supplementary Figure S5c).

Makrofagi tkanki jelitowej wywodzą się wyłącznie z monocytów krwi i nie ulegają samoodnowieniu.8, 10 Sygnalizacja receptora czynnika stymulującego kolonie 1 (CSF-1R) kontroluje różnicowanie Ly6Chi w monocyty Ly6Clo31 i jest wymagana do dojrzewania i wymiany monocytów Ly6Clo typu rezydującego i makrofagów tkankowych, ale jest zbędna do produkcji monocytów Ly6Chi lub funkcji zapalnej.32. Aby ocenić względny udział monocytów MHCII+ i makrofagów tkankowych w rozwoju zależnego od IL-23 zapalenia jelit, przed indukcją zapalenia jelita grubego podawaliśmy myszom CX3CR1GFP/+ mAb blokujący anty-CSF-1R lub kontrolę izotypową. Grupa myszy została przeanalizowana w dniu 0 (Supplementary Figure S6a,b), podczas gdy pozostałe myszy były traktowane Hh i anty-IL-10R i kontynuowały leczenie anty-CSF-1R. W 4 dni po infekcji Hh i leczeniu anty-IL-10R makrofagi były prawie nieobecne w okrężnicy myszy leczonych anty-CSF-1R. Niejednorodny przedział Ly6Clo CX3CR1int makrofagów/DC był również znacznie zmniejszony u tych myszy (Figura 7a,b i Suplementacyjna Figura S6c). Chociaż całkowita liczba leukocytów okrężnicy pozostała niezmieniona (Figura 7c), nastąpił wzrost odsetka granulocytów w tych warunkach (Figura 7d). Co ciekawe, wyczerpanie makrofagów dodatkowo korelowało ze zwiększoną ekspresją Il23a w obrębie lamina propria w dniu 4 (Figura 7e). Jednakże pozbawienie makrofagów za pośrednictwem anty-CSF-1R w całym przebiegu zapalenia jelita grubego nie wpłynęło na liczbę komórek zapalnych gromadzących się w okrężnicy (Figura 7f) lub nasilenie patologii jelitowej (Figura 7g) 2 tygodnie po infekcji Hh i blokadzie sygnalizacji IL-10R, sugerując, że monocyty i makrofagi MHCII+ mogą wykazywać funkcjonalną redundancję podczas zapalenia.

Rysunek 7
figure7

Makrofagi dzielą funkcjonalną redundancję z monocytami MHCII+ dla produkcji interleukiny-23 (IL-23). Myszy CX3CR1GFP/+ leczono blokującym przeciwciałem monoklonalnym anty-CSF-1R (mAb) lub kontrolą izotypu (Iso) i analizowano (a-e) 4 dni lub (f, g) 2 tygodnie po leczeniu Helicobacter hepaticus (Hh) i anty-IL-10R mAb. (a) Reprezentatywne wykresy sortowania komórek aktywowane fluorescencją (FACS) i (b) częstości wśród leukocytów CD45+ wskazanych podzbiorów mieloidalnych, jak określono na rycinie 1c. (c) Całkowita liczba komórek błony śluzowej okrężnicy na mysz. (d) Częstość neutrofili wśród komórek CD45+. (e) Analiza ilościowa PCR (qPCR) ekspresji mRNA Il23a przez całkowite komórki okrężnicy analizowane w 4. dniu. (f) Całkowita liczba komórek okrężnicy na myszy 2 tygodnie po leczeniu Hh i mAb anty-IL-10R. (g) Ocena histopatologiczna jelita grubego. Punkty danych reprezentują pojedyncze myszy, słupki wskazują średnią. Dane są zebrane z dwóch eksperymentów i reprezentatywne dla trzech niezależnych eksperymentów. *P<0,05, **P<0,01, jak określono testem U Manna-Whitneya. CSF, czynnik stymulujący kolonie; DC, komórka dendrytyczna; Macs, makrofagi; MHCII, główny kompleks zgodności tkankowej klasy II; NS, nieistotne; Uninf, niezakażony.

Slajd PowerPoint

.

Dodaj komentarz